細胞膜是一種特殊生物膜，不僅保證了細胞內(nèi)各種生理反應(yīng)有序進行，也實現(xiàn)了物質(zhì)、能量和信號的正常傳導(dǎo)，其大部分功能依靠細胞膜上的膜蛋白完成。膜蛋白提取的難點較多，主要原因是膜蛋白在生物體內(nèi)的表達水平較低，具有強的疏水特性，并且通常在實驗條件下難以維持正確構(gòu)象。下面讓我們一起來看看常見的膜蛋白提取方法都有什么吧！

　　一、先分離膜，然后提取

　　如選用冷熱交替法、反復(fù)凍融法、超聲破碎法、玻璃勻漿法、自溶法和酶處理法使得細胞破碎，然后通過剃度離心得到含有膜蛋白的粗組分。

　　（例如：michael11液氮研磨組織→加入勻漿緩沖液及蛋白酶抑制劑→差速離心→蔗糖密度梯度離心→收集37%與41%間的成分，即為質(zhì)膜部分→裂解即可收集膜蛋白）。

　　二、用特殊的去污劑選擇性的分離

　　采用去垢劑將疏水蛋白從其膜結(jié)構(gòu)中溶解下來，然后將蛋白質(zhì)穩(wěn)定。去垢劑的選擇通常是依據(jù)對所需要蛋白質(zhì)的提取效率來確定，但在某些情況下，還要考慮到以后的純化步驟。雖然許多膜蛋白必須在去垢劑存在的情況下進行純化，但最終仍可能需要除去去垢劑。在設(shè)計膜蛋白溶解方案時，必須考慮某一去垢劑的特殊性質(zhì)。如tritonX-100在280nm處有吸收，如果某蛋白質(zhì)的測試與280 nm處的吸收有關(guān)，就應(yīng)避免使用這類去垢劑。將膜制劑與胞質(zhì)蛋白及細胞核分離后，再進一步從細胞膜制劑中將所需的膜蛋白增溶下來。這種做法的好處是可以用強烈的去垢劑提取細胞骨架的相關(guān)蛋白，而無需考慮胞質(zhì)蛋白、細胞核成分或染色質(zhì)成分的混入。使用這種方法所獲得的膜蛋白，無論在種類上還是數(shù)量上，都比酸溶解法所得到的蛋白（＜5000 Da）要多。

　　一般提取的膜蛋白量往往只占膜蛋白總量的不足0.1%，所以充分的膜蛋白的提取，無疑對于研究膜蛋白的結(jié)構(gòu)和功能都是非常重要的。第二種方法簡單，可靠，但有時含有其他蛋白。一般的都是利用4度時所有的蛋白質(zhì)原則上都溶于TritonX-114水溶液，在溫度超過20度時，此溶液分為水相和去污相；此時親水性蛋白溶于水相，疏水的膜蛋白溶于去污劑相中。利用此性質(zhì)可提取膜蛋白。

　　三、膜蛋白色譜（CMP）

　　CMP+分離強疏水性蛋白、多肽混合物的層析系統(tǒng)，一般有去垢劑（如SDS）溶解膜蛋白后形成SDS-融膜蛋白，并由羥基磷灰石為固定相的柱子分離純化。羥基磷灰石柱具有陰離子磷酸基團（P-端），又具有陽離子鈣（C-端），與固定相結(jié)合主要決定于膜蛋白的大小、SDS結(jié)合量有關(guān)。利用原子散射法研究cAMP的分離機制發(fā)現(xiàn)，樣品與SDS結(jié)合后在離子交換柱上存在SDS分子、帶電荷氨基酸與固定相中帶電離子間的交換，從而達到分級分離的目的。

　　四、離心柱法提取膜蛋白

　　高滲的蛋白裂解液讓細胞溶漲破裂后，超高速離心。

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